化學感受態(tài)細胞是常規(guī)克隆和亞克隆實驗應用較為合適的解決方案。經(jīng)氯化鈣處理，促進質粒DNA黏附于感受態(tài)細胞膜上。將感受態(tài)細胞通過水浴熱激，使細胞膜孔打開，從而質粒可以進入。

操作方法：（以下操作均按無菌條件的標準進行）

1、取感受態(tài)細胞置于冰浴中，如需分裝可將剛融化細胞懸液分裝到無菌預冷的離心管中，置于冰浴中。一次轉化感受態(tài)細胞的建議用量為50-100μl，可以根據(jù)實際情況分裝使用。應注意所用DNA體積不要超過感受態(tài)細胞懸液體積的十分之一。

以下實驗以100μl感受態(tài)細胞為例。

2、向感受態(tài)細胞懸液中加入目的DNA（50μl的感受態(tài)細胞能夠被1ng超螺旋質粒DNA所飽和），輕輕旋轉離心管以混勻內(nèi)容物，在冰浴中靜置30分鐘。

3、將離心管置于42℃水浴中放置90秒，然后快速將管轉移到冰浴中，使細胞冷卻2-3分鐘，該過程不要搖動離心管。

4、向每個離心管中加入500μl無菌的SOC或LB培養(yǎng)基（不含抗生素），混勻后置于37℃搖床振蕩培養(yǎng)45分鐘（150轉/分鐘），目的是使質粒上相關的抗性標記基因表達，使菌體復蘇。

5、將離心管內(nèi)容物混勻，吸取100μl已轉化的感受態(tài)細胞加到含相應抗生素的SOB或LB固體瓊脂培養(yǎng)基上，用無菌的彎頭玻棒輕輕的將細胞均勻涂開。將平板置于室溫直至液體被吸收，倒置平板，37℃培養(yǎng)12-16小時。

注：涂布用量可根據(jù)具體實驗來調整。如轉化的DNA總量較多，可取更少量轉化產(chǎn)物涂布平板；反之，如轉化的DNA總量較少，可取200-300μl轉化產(chǎn)物涂布平板。如果預計的克隆較少，可通過離心（4,000rpm,2分鐘）后吸除部分培養(yǎng)液，懸浮菌體后將其涂布于一個平板中。（涂布剩余的菌液可置于4℃保存，如果次日的轉化菌落數(shù)過少可以將剩下的菌液再涂布新的培養(yǎng)板）

注意事項：

1.進行轉化操作時，應根據(jù)相應溫度及無菌條件的要求進行。

2.感受態(tài)細胞應保存在-70℃，不可多次凍融和放置時間過長，以避免感受態(tài)細胞的轉化效率。

3.為防止轉化實驗不成功，可以保留部分連接反應液，以重新轉化，將損失降到很低的程度。